临床过继性免疫细胞治疗在临床应用中的

编者按：肿瘤已经成为威胁国人生命的第一大要素,而随着环境污染的进一步加重,肿瘤的发病率、死亡率均呈不断上升趋势,与之相应的是常规手术、放疗、化疗的三大标准治疗方案,并不能明显降低肿瘤患者的死亡率,抗肿瘤治疗似乎进入了一个瓶颈阶段。

近些年来,肿瘤免疫治疗取得长足的进步,在多项临床试验中取得良好的疗效。过继性细胞免疫治疗(adoptivecelltherapy,ACT)属于肿瘤免疫治疗的重要组成部分,在我国已有相应技术广泛用于临床,本文拟就ACT技术的发展历程和目前临床最关心的ACT技术应用中关于细胞种类、回输数量、疗效评价的问题作一简单的综述。

　　1ACT技术的发展历程

　　ACT技术是通过对自体免疫细胞进行体外激活和扩增,然后将其重新输回肿瘤患者体内,促使其在体内发挥杀伤肿瘤细胞作用的技术,效应细胞的种类、数量、活性是直接影响临床疗效的关键。

　　自年Rosenberg教授首次报道淋巴因子激活的杀伤细胞(lymphokineactivatedkillercell，LAK细胞)以来,ACT曾一度轰动临床肿瘤学界,而后却因为LAK细胞对白细胞介素2(interleukin2,IL-2)的依赖性严重限制了LAK细胞的临床应用,其后虽然有肿瘤浸润性淋巴细胞(tumorinfiltratinglymphokine,TIL)、CD3单抗激活的杀伤细胞(anti-CD3monoclonalantibodyactivatedkillerscell,CD3AK)等技术的出现,但ACT技术始终未能真正用于临床。年,细胞因子诱导杀伤细胞(cytokineinducedkillercell,CIK细胞)技术的出现,首次使得ACT摆脱了细胞培养及回输过程中对大剂量IL-2的依赖,明显减少了患者的临床副反应,从而使得ACT技术大规模临床应用成为可[1-2]。

　　在国外,研究较多的是特异性的TIL细胞和治疗性疫苗技术[3-5]。年,FDA批准Provegen用于晚期耐药的前列腺癌患者的治疗，无疑是免疫细胞治疗技术发展中的一块里程碑,也极大地促进了ACT技术研发和应用的热潮。而随着基因工程技术的进步,对T细胞进行基因改造的嵌合抗原受体的T细胞(chimericantigenreceptor-engineeredTcell,CART)技术也在多种临床前研发中取得了巨大的成功[6]。

　　在国内,CIK技术得到了大力发展,医院将CIK及CIK基础上的ACT技术用于肿瘤患者的治疗,并认为CIK技术能明显改善患者生活质量，提高晚期肿瘤患者的生存期[7-9],部分敏感型患者更有可能获得极好的疗效,遗憾的是缺乏可靠的检测手段来进行敏感患者的筛选。

　　2ACT细胞的选择

　　依据效应细胞特异性不同,ACT技术可以分为两大类[10]。第一类包括LAK细胞、CIK细胞、自然杀伤细胞(naturalkillercell,NK细胞)等,主要以非MHC限制性方式非特异性地杀灭肿瘤细胞。LAK细胞因为需要依赖较大剂量的IL-2,治疗副作用较大，并且难以区分疗效来源于细胞还是IL-2，现在已经很少应用。CIK细胞在国内应用非常广泛,是临床应用中主流的ACT技术,通常采集患者外周血中的单个核细胞,在体外经过2周的培养，可以达到1×的细胞数量,技术比较成熟,但是由于各家机构采取的配方有所不同，培养的细胞组成比例也有所差异,目前尚没有切实可行的质量控制标准，因此存在很多的质疑。NK细胞的培养相对更为复杂，多用于免疫保健，临床应用较少。第二类包括树突状细胞(dendriticcell,DC)疫苗、TIL细胞、细胞毒性T细胞(cytotoxicT-lymphocyte,CTL)、CART细胞等具有肿瘤特异性的免疫细胞疗法。治疗性DC疫苗通过激发机体的免疫功能而抗肿瘤，属于主动免疫治疗技术,目前国内、国外均将其列入药品管理范畴。而TIL、CTL、CART等技术则是直接将具有杀灭肿瘤活性的效应细胞回输人体，属于被动免疫治疗技术。

　　TIL细胞、CTL细胞都是被肿瘤抗原激活后的特异性的细胞毒性T细胞,对于肿瘤细胞有高度特异的杀伤作用,国内外研究都比较多,也一度被免疫学家寄予厚望。TIL细胞主要来源于肿瘤组织周围浸润的T细胞,在体外经过筛选、扩增而成,相对来说获取困难,技术体系比较复杂,细胞的培养周期较长,培养成功率不高,极大地限制了临床应用。近年来,随着WAVE生物反应调节器等自动化培养体系的成功构建,TIL的临床应用前景更被看好,目前有多个TIL的临床试验正在开展[11],部分患者取得了明显的疗效,并逐渐从恶性黑色素瘤向晚期乳腺癌、肺癌等实体瘤的治疗上过渡。

　　CTL细胞的研究国内外均比较多,大多采用抗原致敏后的DC来激活T细胞进而获取特异性的CTL细胞,研究的重点在于使用肿瘤抗原致敏DC的方法,从全细胞肿瘤抗原、多肽抗原、病毒载体介导的抗原等,研究者尝试了多种不同的方法,并取得了一定的进展,国外的研究大多处于临床前和临床试验阶段[12],国内已经有AAV介导的抗原致敏技术用于临床,甚至在部分地区已被列入医保报销范围,取得了较大的进步。

　　近年来取得突破的CART技术得益于基因工程技术的发展。研究者直接将能识别肿瘤抗原的相应抗体和T细胞的激活信号同时通过病毒载体导入T细胞,从而改变了T细胞识别和杀伤肿瘤细胞的能力,由改造后的T细胞同时行使DC和CTL的功能,从而成功绕过了MHC限制性问题,并在血液系统肿瘤中率先取得了突破[13-14]。目前,已经有多种CART细胞实验方案用于血液系统、实体肿瘤的治疗。

　　然而,肿瘤实质上是一群变异的细胞,往往具有高度的不均一性,单纯的靶向一类肿瘤抗原,最多只能杀灭一部分的肿瘤细胞,残存的肿瘤细胞依旧缺乏有效的治疗措施,此外,肿瘤细胞还可以在增殖过程中不断地突变或者进化,降低该类抗原的表达,进而逃逸免疫细胞的杀伤。而基因改造后的免疫细胞长期存留于体内,也有进一步增殖的潜力,可能诱发T细胞相关的级联反应,造成严重的后果。

　　亦有研究者使用病毒载体将GM-CSF等细胞因子的基因导入T细胞中,利用T细胞可追踪癌细胞的特性,使得肿瘤局部的细胞因子表达上调,从而改变肿瘤局部的免疫环境,期望T细胞不仅能发挥自身识别和杀伤肿瘤细胞的作用,还可以借助细胞因子的表达募集更多的免疫细胞参与对肿瘤的攻击[15]。而同样有研究者试图将细胞毒性的药物与T细胞相连,从而发挥靶向杀肿瘤的作用。

此外,我国学者应用间充质干细胞(Mesenchymalstemcells,MSCs)作为靶向载体,使用基因重组后能持续表达一型干扰素(Interferon-α,IFNα)的MSCs用于恶性黑色素瘤的治疗,发现MSC-IFNa可以极为有效地抑制B16黑色素瘤细胞的增殖,促进黑色素瘤细胞凋亡,其抗肿瘤机制与NK细胞和CD8+T细胞相关[16]。

　　3回输细胞数量的问题

　　体外研究表明,CIK、NK等免疫细胞主要通过非特异性模式杀伤肿瘤细胞,因此通常10-50倍的效靶比才能见到明显的杀伤效果[17],而TIL、CTL、CART这些特异性杀伤细胞则可以在比较低的效靶比时有效杀伤肿瘤细胞,甚至单个T细胞就可以杀灭多个肿瘤细胞[11,13,18]。因此在使用不同模式的ACT进行治疗时,对效应细胞的数量要求不一样。而依据估算,直径在1cm的实体肿瘤,大约含有肿瘤细胞,因此,即便不考虑实体肿瘤局部的屏障和抑制性的免疫微环境的影响，临床上确诊后的实体肿瘤,细胞数量也通常远大于血液系统肿瘤,这也是ACT治疗总是首先在血液病上取得突破的主要原因之一。

　　传统的观点认为,ACT治疗中使用的是成体的T细胞,因此在回输体内后不具备增殖能力。而近年来,Carl教授领导的研究小组证实回输的含有CD19抗体的CART细胞在患者体内扩增了倍,并且在回输后6个月仍能检测到较高数量的特异性T细胞。而Carl等对于用比较小数量的CART细胞取得良好的临床疗效也很意外,并推测ACT治疗前的适当化疗以清除淋巴细胞在其中起到一定的作用[13-14]。然而,国内临床上在使用CIK、NK等ACT技术时因为对化疗副作用的顾虑,通常没有采用化疗等预处理措施,直接将培养成熟的T细胞回输人体,因此对于细胞数量的要求要高得多。依靠体外实验的结果推论,在CIK、NK等细胞进行抗肿瘤治疗时,效应细胞的数量越多越好。既往的培养模式,CIK等细胞的培养往往只能到达这样的数量,因此临床疗效比较有限,而近年来细胞培养技术的进步,使得单次培养细胞的量突破,也明显促进了临床疗效的提高。

　　随着对肿瘤微环境的深入研究,研究者发现,许多肿瘤患者体内并不是缺乏能杀灭肿瘤的免疫效应细胞,而是由于肿瘤微环境中存在诸多的抑制性因素,进而导致这些免疫细胞不能杀灭肿瘤,因此,有研究者认为免疫治疗的重点在于去除机体中的免疫抑制信号,而不是使用人工培养的方法,由外界提供大量功能性免疫效应细胞。此外,机体有维持内环境相对稳定的机制,而ACT技术在短时间内提供大量的具有杀伤功能的免疫细胞,是否会促使机体免疫系统误以为自身处于一种免疫亢进状态,继而出现负调节反应,导致体外培养的免疫细胞功能受到抑制、甚至被快速灭活。是否应当限定每一次细胞回输的数量,保持小剂量多次回输的模式,这些问题都有待进一步的研究。

　　体外实验提示,CIK中杀伤肿瘤的主要是CD3+CD56+T细胞,CTL和TIL中起主要作用的是CD8+T细胞,因此这两种细胞的比例一度成为评价CIK或TIL、CTL培养效果的标志。但一味的追求这两类细胞的数量和比例并不可取,已经有研究表明,含有部分CD4+T细胞的混合细胞群体比单一细胞对肿瘤的杀伤作用更佳[19],但究竟应该是怎样的一种比例,尚没有明确的结论。

　　4免疫细胞治疗的疗效评价问题

　　目前通用的RECIST系统,通常建议在2个疗程的化疗后全面复查,评估患者病情是否有效控制,进而判断前期治疗是否有效[20]。这样的评估方式主要是基于细胞毒性药物对患者的伤害性,因此更加强调避免对患者不必要的伤害,一旦选用细胞毒性药物,必须在比较短的时间内决定,该治疗手段在伤害患者的同时是否有效地减少或控制了肿瘤的生长,进而综合考量继续进行这种治疗手段的必要性。

　　然而这种评估模式,在实际应用中经常会遇到挑战,肿瘤患者对于某种治疗手段的临床应答率,与患者的生存质量、生存期并没有必然的联系。年公布的FIRE-3临床研究中,主要研究终点客观缓解率(objectiveresponserate,ORR)结果为阴性,然而,次要研究终点总生存期(overallsurvival,OS)也是肿瘤疗效评价的金标准,反而出现了差异,也就是说在短期内,无论使用贝伐单抗还是西妥昔单抗联合化疗,短期疗效是没有差异的,而随着观察时间的延长,两种治疗方法在患者的总生存期出现了明显差异,归根到底,肿瘤治疗的最终目的是延长患者生存期,短期内是否能将肿瘤缩小,并不是必不可少的。尽管对于这样的研究结果有种种不同的解读影响患者OS的因素也比较多,但不可否认的是,当我们将免疫治疗和化疗联合应用的时候,现有的疗效评价指标存在一定的局限性。

　　免疫治疗与化疗最大的不同在于前者对于患者机体本身的伤害很少,对于国内最常见的DC-CIK治疗而言,回输的CIK细胞对于正常机体细胞几乎没有杀伤作用,因而,面对免疫治疗的评价是否必须如化疗一样,在2个疗程后就来判断前期治疗是否有效,是值得商榷的。尤其是对于部分晚期患者,治疗的初衷就是控制患者症状,延缓肿瘤生长,而非绝对意义上的消灭肿瘤细胞,因此,是否在短期内缩减现有肿瘤负荷,不应当成为疗效评估的唯一标准。

　　年提出的irRC标准[21],将总体瘤负荷作为评估的主要指标,并修改了既往实体瘤治疗过程中一旦出现新发病灶就判定为疾病进展的标准,的确是一种进步,然而,因为免疫细胞治疗的副作用几乎可以忽略,那么,对于治疗后并无不适的患者,究竟什么时候进行疗效评价合适,尚没有一定的标准,而同样,这些患者究竟需要接受多少个疗程的治疗,也没有确切的标准。从我们的前期临床实践来看,患者至少需要接受2个疗程的治疗后再评估病情,而对于疗程总数而言,似乎疗程越多,疗效越好,但依旧缺乏足够的数据支持[22]。

　　5结论

　　肿瘤ACT技术从发明以来先经历了一个短暂的辉煌后陷入比较长时间的低谷,而近年来又随着多项临床试验的结果而再次获得研究者的瞩目虽然仍旧有很多的争议,但是ACT技术本身的安全、毒副反应轻这样一些特点相较于常规的抗肿瘤疗法具有无可比拟的优势,如果我们能进一步的解决肿瘤抗原靶向缺失、T细胞在体内的扩增、持续存在等问题,同时建立标准化的细胞培养流程,或者全自动化的培养体系,保证细胞培养的安全、可靠,ACT技术必将在肿瘤治疗领域发挥更重要的作用。

（作者：黄浩张正涵AllenEdwardGoldenthal罗成林罗晓玲；发表于《中国细胞生物学学报》；

深圳市战略新兴产业发展专项资金(批准号:CYZZ03291453)资助的课题；ThisworkwassupportedbytheSpecialFundfortheDevelopmentofShenzhenStrategicEmergingIndustries(GrantNo.CYZZ03291453)）

更多了解

A:免疫细胞储存的意义

人的免疫力在青壮年时期达到巅峰，此后，随着年龄的增长，免疫力逐渐下降。免疫力下降意味着免疫细胞对抗病毒、细菌以及癌变的能力逐年降低，患病风险也相对提高。免疫细胞越年轻，其免疫活性越好，今天的免疫细胞肯定比明天的年轻。

肿瘤、衰老、亚健康等多种疾病与免疫功能有关，最有希望攻克这些疾病的技术之一就是免疫细胞疗法，而免疫细胞疗法成败的关键在于是否能取得健康的免疫细胞。在年轻或健康时，储存免疫细胞，为自己的“生命种子”保险十分重要，等到需要的时候再培养、扩增并输回人体进行免疫细胞治疗，是当前医疗科技界的新选择。

从人体内抽出一定数量的免疫细胞，利用独创的专利技术，在确保免疫细胞的多样性与高潜能的条件下，将免疫细胞保存在低于-℃的低温条件下，使细胞处于休眠状态。在我们需要的时候，再将冻存的种子细胞取出来，经过实验室的培养、扩增，使之成为一支年轻的、充满活力的免疫细胞特种部队。定期进行细胞回输保健，可以起到延缓衰老，清除异常细胞，降低肿瘤发病风险等多种作用。“细胞存进银行,健康就是利息”，也相当于为未来的健康买了一份真正能起作用的“保险”。因此，储存免疫细胞的场所又喻为“细胞银行”。

B:免疫细胞储存的最好时机

成年后随着年龄的增加，人的免疫力逐渐下降，这主要与免疫器官，尤其是胸腺的老化衰弱有关。胸腺是T细胞分化、发育、成熟的场所，就像一个训练营，会源源不断产生新类型T细胞受体的T细胞，也就是针对不同病原的新“兵种”。但青春期以后，胸腺慢慢萎缩，不再产生新的“兵种”。而免疫系统的持续工作还会消耗原有的“兵种”，最终导致病毒感染、癌细胞及衰老无法控制。

对成年人来说当下是您储存免疫细胞的最佳时期，因为今天的细胞永远比明天年轻。所以您今天储存的细胞既能保留多样性，未来还可以通过扩增，获得数量巨大、功能强悍又能识别各种病原的免疫细胞群体。

C:细胞冻存的流程及保存方法

目前冻存技术成熟，冻存的基本流程是将外周血里面的红细胞、血小板等去除，将其中的单个核细胞（PBMC）分离出来冻存。冻存的细胞未来可以用于各种不同的过继性免疫细胞治疗。我们独家的技术体系可以使复苏细胞活率达到90%以上，而且可以让种子细胞的状态得到重新启动，进而使其扩增能力优于未经冻存的细胞。

现行的细胞冷冻保存技术通过将细胞悬浮在加有冷冻保护剂的细胞冻存液中，以安全的降温速度降至-℃以下，使细胞进入休眠状态，并在此温度下进行长期保存。

细胞冷冻技术的关键是尽可能地减少冷冻过程中胞内水分子形成大的冰晶。目前，细胞冻存最常用的技术是程序降温法，主要通过添加适量保护剂，以缓慢冷冻的方法来将冻存细胞降温到目标温度，长期保存。采用甘油或二甲基亚砜等物质作为保护剂，是因为这些物质分子量小、溶解度大、易穿透细胞，可以使冰点下降，提高细胞膜对水的通透性，且对细胞无明显毒性。降低降温的速度可以减慢冰晶生长的速度，减小结晶过程对细胞的伤害。

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